L'activité antivirale d'un film de peinture est sa capacité, dans des conditions définies, à inactiver les virus ou à leur faire perdre leur infectiosité. GB/T 21866-2025 Test method for antiviral activity and antimicrobial of paints film (publiée le 1er août 2025, en vigueur le 1er février 2026, remplaçant GB/T 21866-2008) intègre « l'antiviral » au cadre normalisé chinois des revêtements. Cet article détaille le squelette de l'essai, les calculs et les limites côté formulation.
TL;DR
GB/T 21866-2025 quantifie la performance antivirale d'un film par une méthode à film de recouvrement couplée à un titrage d'infectiosité sur culture cellulaire : deux souches modèles — virus influenza A (H3N2, ATCC VR-1679) sur cellules MDCK et entérovirus EV71 (ATCC VR-1432) sur cellules Vero — sont inoculées sur le film, élueés après 24 h, et le titre infectieux résiduel est mesuré par test de plages (plaque assay) ou TCID₅₀. Chaque +1 de la valeur d'activité antivirale équivaut à une baisse d'un facteur dix (90 %) du comptage viral ; R = 3,0 correspond à environ 99,9 % d'inactivation, référence courante du secteur. La norme est une méthode d'essai sans classement de conformité — les seuils d'allégation relèvent des normes de produit ou des contrats, et antibactérien et antiviral doivent être certifiés séparément.
Antiviral ou antibactérien : des cibles différentes
Les virus n'ont pas de métabolisme propre et se répliquent dans des cellules vivantes ; bactéries et champignons métabolisent de façon autonome. Le test antibactérien (chapitre 5 de la nouvelle norme ; ISO 22196:2011) compte des colonies, tandis que le test antiviral mesure le titre infectieux — une particule inactivée mais portant un acide nucléique intact reste amplifiable par PCR sans plus représenter un risque d'infection. Le chapitre 3 de l'édition 2025 définit « antiviral » comme l'inactivation des virus ou la suppression de leur infectiosité, et supprime les termes processuels de l'édition 2008.
Les données publiées montrent pourquoi les surfaces comptent dans la chaîne de transmission : le SARS-CoV-2 peut rester infectieux sur solides pendant environ 7 jours (Behzadinasab et al., ACS Appl. Mater. Interfaces, 2020, DOI 10.1021/acsami.0c11425). L'essai reproduit exactement cette chaîne : suspension virale sur le film — contact — élution — infectiosité résiduelle.
Squelette de l'essai GB/T 21866-2025
Souches, cellules hôtes et incubation
Le tableau 1 de la norme fixe deux souches modèles : H3N2 (enveloppée) sur cellules MDCK à (34±1) °C, et EV71 (non enveloppée) sur cellules Vero à (37±1) °C, toutes deux en milieu EMEM avec (5±0,5) % (en volume) de CO₂. D'autres souches faiblement pathogènes peuvent être convenues entre les parties, à consigner avec leur nom et leur numéro de collection.
Spécimens et film de recouvrement
Les spécimens antiviraux sont des panneaux revêtus en aluminium, verre ou acier inoxydable, (50±2) mm × (50±2) mm et d'au moins 1 mm d'épaisseur, au nombre de 9 au moins ; les témoins sont des films polyéthylène de même taille, au nombre de 12 au moins. Le film de recouvrement est en polyéthylène basse densité (0,918–0,928 g/cm³), (40±2) mm × (40±2) mm, épaisseur 0,05–0,10 mm, plein ou perforé de 144 trous (annexe A) — le film perforé laisse passer l'éluent et empêche les films très adsorbants de « piéger » le virus et de créer de faux positifs. Les films absorbants doivent être jugés et préconditionnés selon l'annexe C.
Inoculation, élution et titrage
Le stock viral doit dépasser 10⁷ PFU/mL (ou TCID₅₀/mL) ; l'inoculum est dilué à 10³–10⁴ PFU/mL, et une suspension de travail décongelée se conserve à 2–8 °C pendant 4 h au plus. Après contact, les spécimens sont élueés avec du milieu SCDLP (ou un autre neutralisant validé en pré-essai), après exclusion préalable de la cytotoxicité de l'éluat sur les cellules hôtes. L'infectiosité résiduelle est mesurée par test de plages (plaques 6 puits) ou TCID₅₀ (plaques 96 puits).
Calculs
Taux antiviral (%) = (1 − titre essai ÷ titre témoin) × 100 ; valeur d'activité antivirale = lg(titre témoin) − lg(titre essai). Les articles 4.8 et 5.9 définissent les essais de durabilité antivirale et antibactérienne avec re-essai après vieillissement — la validation de formule doit viser le taux de rétention après vieillissement, non la valeur initiale.
Chiffres clés
- Essais en laboratoire de biosécurité BSL-2 ou supérieur (GB 19489 ; enceinte de sécurité biologique selon GB 41918).
- Inoculum 10³–10⁴ PFU/mL ; titre du stock >10⁷ PFU/mL ; suspension de travail ≤4 h à 2–8 °C.
- Spécimens (50±2) mm × (50±2) mm, épaisseur ≥1 mm ; ≥12 témoins et ≥9 pièces d'essai.
- Film de recouvrement LDPE (40±2) mm × (40±2) mm × 0,05–0,10 mm ; milieux stérilisés à (121±2) °C, (103±5) kPa.
- Incubation (34±1) °C (H3N2) / (37±1) °C (EV71), (5±0,5) % CO₂, contact 24 h.
- Conversion : R=1 → 90 % ; R=2 → 99 % ; R=3 → 99,9 % d'inactivation.
- Chronologie : publiée le 1er août 2025, en vigueur le 1er février 2026 ; l'édition 2008 est retirée le même jour.
Trois normes en parallèle
| Élément | GB/T 21866-2025 (en vigueur) | GB/T 21866-2008 (remplacée) | ISO 21702:2019 (référence) |
|---|---|---|---|
| Domaine | films de peinture fonctionnels sur bâtiment et bois | films de peinture antibactériens | plastiques et autres surfaces non poreuses |
| Cible | virus + bactéries | bactéries seulement | virus seulement |
| Souches | H3N2 ATCC VR-1679 (MDCK), EV71 ATCC VR-1432 (Vero) | S. aureus AS1.89, E. coli AS1.90 | virus influenza A, calicivirus félin |
| Contact | (34±1) °C / (37±1) °C, (5±0,5) % CO₂, 24 h | (37±1) °C, HR >90 %, 24 h | (25±1) °C, 24 h |
| Résultat | taux / valeur d'activité antivirale ; partie antibactérienne analogue | taux antibactérien (classe I ≥99 %, classe II ≥90 %, plus seuil de durabilité) | valeur d'activité antivirale (différence de log) |
| Type | méthode d'essai, sans classement | méthode + classement d'efficacité | méthode d'essai |
| Durabilité | 4.8 antivirale ; 5.9 antibactérienne | re-essai après lampe UV 30 W (253,7 nm) pendant 100 h | pas de vieillissement obligatoire |
Vue formulation : ce qui soutient une allégation antivirale
Les systèmes métalliques (ions et oxydes d'argent, de cuivre, de zinc) agissent sur les protéines d'enveloppe, les caprides et les acides nucléiques ; le TiO₂ photocatalytique génère des espèces réactives de l'oxygène sous lumière ; les systèmes organiques (ammonium quaternaire, polyguanidine, halamine) s'attaquent aux enveloppes et caprides. Trois points décident de la robustesse des données :
1. Souches enveloppées et non enveloppées
H3N2 possède une enveloppe lipidique et survit moins longtemps ; EV71, non enveloppée, est plus robuste. Un composant actif seulement sur les virus enveloppés peut échouer sur EV71 — les deux souches doivent être au niveau pour une allégation complète.
2. Rétention après vieillissement
La réserve d'argent/cuivre d'un film est finie ; lumière et lavages consomment la couche active, et les UV peuvent catalyser le jaunissement de l'argent (Ag₂O/AgCl gris-jaune). Re-tester après vieillissement et suivre le ΔE — c'est ce qui transforme les données de laboratoire en pratique d'ingénierie.
3. Formulation des allégations
L'édition 2025 a supprimé le classement antibactérien de 2008 et ne conserve que les méthodes. Les seuils de taux / valeur d'activité relèvent des normes de produit, déclarations d'entreprise ou contrats (référence courante : valeur d'activité ≥3,0, soit ≥99,9 % ; côté produit, HG/T 3950-2007 suggère ≥99 % avec ≥95 % de rétention après vieillissement). Les allégations exigent des rapports tiers, et un rapport antibactérien ne peut soutenir une allégation antivirale.
FAQ
Q1 : Quelles différences majeures avec l'édition 2008 ?
Nouvel essai d'activité antivirale (chapitre 4) et annexes milieu EMEM (B), film perforé (A), jugement de l'absorption d'eau et préconditionnement (C) ; suppression des termes et du classement d'efficacité de 2008 ; domaine étendu aux films fonctionnels sur bâtiment et bois, autres usages par référence.
Q2 : Un rapport antiviral peut-il remplacer un rapport antibactérien ?
Non. Cibles et méthodes diffèrent, et un même composant n'inactive pas nécessairement bactéries et virus de la même façon ; les chapitres 4 et 5 sont deux essais parallèles. Les documents d'acceptation doivent porter les deux rapports.
Q3 : La valeur 3,0 est-elle le seuil de conformité de la norme ?
Non. L'édition 2025 ne fixe que des méthodes, sans classes ; ≥3,0 (≈99,9 %) est une référence sectorielle, le seuil réel relevant de la norme de produit ou du contrat.
Q4 : Pourquoi H3N2 et EV71 ?
Elles représentent respectivement les virus enveloppés et non enveloppés, couvrant les deux classes structurelles ; souches faiblement pathogènes manipulables en BSL-2, avec numéros de collection à consigner (ATCC VR-1679 / VR-1432).
Q5 : Que préparer côté laboratoire et éprouvettes ?
Laboratoire BSL-2 conforme à GB 19489 avec enceinte GB 41918 ; films selon GB/T 1727 et conditionnement selon GB/T 9278 ; substrats aluminium/verre/inoxydable (50±2) mm × (50±2) mm, ≥1 mm, ≥9 pièces ; films absorbants prétraités selon l'annexe C.
Q6 : Quelle norme pour les produits à l'export ?
ISO 21702:2019 pour plastiques et surfaces non poreuses, ISO 18184:2019 pour textiles. Souches et conditions diffèrent entre les trois normes ; les rapports ne sont pas interchangeables, suivre l'exigence du marché cible.
Q7 : La PCR peut-elle remplacer le titrage d'infectiosité ?
Pas seule, pour conclure. Les particules inactivées restent amplifiables : la PCR n'est qu'un outil de dépistage ; la norme fonde son jugement sur le titre infectieux (plages ou TCID₅₀).
Last updated : 2026-10-22
Références : GB/T 21866-2025 (remplaçant GB/T 21866-2008) ; GB 19489 ; GB 41918 ; GB/T 1727 ; GB/T 9278 ; ISO 21702:2019 ; ISO 18184:2019 ; ISO 22196:2011 ; HG/T 3950-2007 ; Behzadinasab S, Chin A, Hosseini M, Poon L, Ducker W A. A Surface Coating that Rapidly Inactivates SARS-CoV-2. ACS Appl Mater Interfaces, 2020, 12(31): 34723-34727. DOI 10.1021/acsami.0c11425.
Kexin New Materials (Guangdong) Co., Ltd.